電泳儀使用方法及注意事項

1.電泳儀通電進入工作狀態后，禁止人體接觸電極、電泳物及其它可能帶電部分，也不能到電泳槽內取放東西，如需要應先斷電，以免觸電。同時要求儀器必須有良好接地端，以防漏電。
2.儀器通電后，不要臨時增加或撥除輸出導線插頭，以防短路現象發生，雖然儀器內部附設有保險絲，但短路現象仍有可能導致儀器損壞。
3.由于不同介質支持物的電阻值不同，電泳時所通過的電流量也不同，其泳動速度及泳至終點所需時間也不同，故不同介質支持物的電泳不要同時在同一電泳儀上進行。
4.在總電流不超過儀器額定電流時（zui大電流范圍），可以多槽關聯使用，但要注意不能超載，否則容易影響儀器壽命。
5.某些特殊情況下需檢查儀器電泳輸入情況時，允許在穩壓狀態下空載開機，但在穩流狀態下必須先接好負載再開機，否則電壓表指針將大幅度跳動，容易造成不必要的人為機器損壞。
6.使用過程中發現異常現象，如較大噪音、放電或異常氣味，須立即切斷電源，進行檢修，以免發生意外事故。
研發背景
1937年，瑞典生化學家Tiselius集前人百余年探索電泳現象之大成，發明了Tiselius電泳儀，在此基礎上建立了研究蛋白質的自由界面電泳方法，利用該法證明人血清是由白蛋白（A）、Α、β、γ球蛋白組成，并因此于1948年獲得阿果獎。隨后電泳技術的發展突飛猛進，1949年，RicketlsMarrack等人證明人血清蛋白質經電泳分離可依次分為白蛋白，Α1、α2、β、γ球蛋白五個組分，1957年Reiner對人血清五個組分蛋白進行了定量分析。
但自由界面電泳沒有固定支持介質，擴散和對流作用較強，影響分離效果，于是在50年代相繼出現了固相支持介質電泳。zui初的支持介質是濾紙和醋酸纖維素膜，目前這些介質在實驗室已經應用較少。在很長一段時間里，小分子物質如氨基酸、多肽、糖等通常用濾紙、纖維素或硅膠薄層平板作為介質進行電泳分離、分析，但目前一般使用靈敏度更高的技術如液相色譜法(HPLC)等來進行分析。而對于復雜的生物大分子，以濾紙、硅膠或醋酸纖維素膜等作為支持介質進行電泳，其分離效果并不理想。于是1959年，Raymond和Weintraub,Davis和Ornstein先后利用人工合成凝膠作支持介質建立了聚丙烯酰胺凝膠電泳，從而大大提高了電泳的分辨率和分離效果，增強了電泳技術的發展、滲透及與其他技術結合配套的能力。致使各式各樣的電泳技術和電泳材料如雨后春筍、競相爭榮，成為當代實驗科學技術中品種繁多、應用廣泛、基礎與技術皆備的大技術。